Oxydosqualène-cyclase
| N° EC | EC |
|---|---|
| N° CAS |
| IUBMB | Entrée IUBMB |
|---|---|
| IntEnz | Vue IntEnz |
| BRENDA | Entrée BRENDA |
| KEGG | Entrée KEGG |
| MetaCyc | Voie métabolique |
| PRIAM | Profil |
| PDB | RCSB PDB PDBe PDBj PDBsum |
| GO | AmiGO / EGO |
| N° EC | EC |
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| N° CAS |
| IUBMB | Entrée IUBMB |
|---|---|
| IntEnz | Vue IntEnz |
| BRENDA | Entrée BRENDA |
| KEGG | Entrée KEGG |
| MetaCyc | Voie métabolique |
| PRIAM | Profil |
| PDB | RCSB PDB PDBe PDBj PDBsum |
| GO | AmiGO / EGO |
Une oxydosqualène-cyclase est une isomérase qui convertit le 2,3-oxydosqualène en stérols et triterpènes à travers une réaction de cyclisation[1].
-
Structure du 2,3-oxydosqualène.
Il existe de deux groupes d'oxydosqualènes-cyclases :
- Les cycloarténols-synthases, présentes chez toutes les plantes, et qui produisent avant tout du cycloarténol ;
- les lanostérols-synthases, présentes chez tous les animaux et les mycètes, chez certaines plantes également, et qui produisent avant tout du lanostérol.
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Structure du cycloarténol. -
Structure du lanostérol.
Les stérols et les triterpènes sont des classes de composés naturels très diversifiées, notamment chez les plantes, qui contiennent généralement de nombreuses oxydosqualènes-oxydases présentant des spécificités variées en matière de substrats et de produits de réaction. La lupéol-synthase et la β-amyrine-synthase[2] sont des exemples d'oxydosqualènes-cyclases. Le mécanisme réactionnel catalysé par ces enzymes est semblable à celui des cyclases squalène-hopène des procaryotes[3]. On a pu identifier, à l'aide de techniques d'évolution dirigée et d'ingénierie des protéines (en), un petit nombre de mutations ponctuelles qui altèrent la spécificité du produit des oxydosqualènes-cyclases, particulièrement en faisant que des cycloarténol synthases produisent essentiellement du lanostérol[4].
Une oxydosqualène-cyclase est une enzyme monomérique. Son site actif est formé de deux domaines en tonneau[5]. Il est constitué essentiellement de résidus d'acides aminés acides chez la plupart des organismes étudiés[6]. Les résidus du site actif favorisent le repliement des oxydosqualènes-cyclases afin de lui donner une forme épousant les contours de son produit de réaction[5]. Ceci est déterminant pour préparer le substrat à sa cyclisation.
Notes et références
- ↑ (en) Ramesha Thimmappa, Katrin Geisler, Thomas Louveau, Paul O'Maille et Anne Osbourn, « Triterpene Biosynthesis in Plants », Annual Review of Plant Biology, vol. 65, , p. 225-257 (PMID 24498976, DOI 10.1146/annurev-arplant-050312-120229, lire en ligne)
- ↑ (en) Satoru Sawai, Tomoyoshi Akashi, Nozomu Sakurai, Hideyuki Suzuki, Daisuke Shibata, Shin-ichi Ayabe et Toshio Aoki, « Plant Lanosterol Synthase: Divergence of the Sterol and Triterpene Biosynthetic Pathways in Eukaryotes », Plant & Cell Physiology, vol. 47, no 5, , p. 673-677 (PMID 16531457, DOI 10.1093/pcp/pcj032, lire en ligne)
- ↑ (en) K. Ulrich Wendt, Karl Poralla et Georg E. Schulz, « Structure and Function of a Squalene Cyclase », Science, vol. 277, no 5333, , p. 1811-1815 (PMID 9295270, DOI 10.1126/science.277.5333.1811, lire en ligne)
- ↑ (en) Silvia Lodeiro, Tanja Schulz-Gasch et Seiichi P. T. Matsuda, « Enzyme Redesign: Two Mutations Cooperate to Convert Cycloartenol Synthase into an Accurate Lanosterol Synthase », Journal of the American Chemical Society, vol. 127, no 41, , p. 14132-14133 (PMID 16218577, DOI 10.1021/ja053791j, lire en ligne)
- (en) Murray W Huff et Dawn E Telford, « Lord of the Rings--The Mechanism for Oxidosqualene:lanosterol Cyclase Becomes Crystal Clear », Trends in Pharmacological Sciences, vol. 26, no 7, , p. 335-340 (PMID 15951028, DOI 10.1016/j.tips.2005.05.004, lire en ligne)
- ↑ (en) Vitor Won-Held Rabelo, Nelilma Correia Romeiro et Paula Alvarez Abreu, « Design Strategies of Oxidosqualene Cyclase Inhibitors: Targeting the Sterol Biosynthetic Pathway », The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology, vol. 171, , p. 305-317 (PMID 28479228, DOI 10.1016/j.jsbmb.2017.05.002, lire en ligne)
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