Rhizopus arrhizus

Rhizopus arrhizus
Ilustracja
Strzępki i zarodnie
Systematyka
Domena

eukarionty

Królestwo

grzyby

Typ

Mucoromycota

Klasa

Mucoromycetes

Rząd

pleśniakowce

Rodzina

Rhizopodaceae

Rodzaj

rozłożek

Gatunek

Rhizopus arrhizus

Nazwa systematyczna
Rhizopus arrhizus A. Fisch.
Rabenh. Krypt.-Fl., Edn 2 (Leipzig) 1(4): 233 (1892)

Rhizopus arrhizus A. Fisch. – gatunek grzybów należący do typu pleśniakowców (Mucorales)[1]. Mikroskopijny grzyb strzępkowy.

Systematyka i nazewnictwo

Pozycja w klasyfikacji według Index Fungorum: Rhizopus, Rhizopodaceae, Mucorales, Incertae sedis, Mucoromycetes, Mucoromycotina, Mucoromycota, Fungi[1].

Po raz pierwszy opisał go Alfred Fischer w 1892 r. i nadana przez niego nazwa naukowa jest aktualna[1]. Ma ponad 70 synonimów. Niektóre z nich:

  • Rhizopus acetoinus Kitahara & S. Fukui, 1950
  • Rhizopus delemar var. multiplicisporus Inui, Y. Takeda & Lizuka 1965
  • Rhizopus microsporus var. pseudochinensis (M. Yamaz.) R. Prakash & A.K. Sarbhoy 1993
  • Rhizopus oryzae Went & Prins. Geerl. 1895
  • Rhizopus sontii Reddi & Subrahm. 1977[2].

Morfologia

Ma zmienne sporangiofory. Mogą być proste lub zakrzywione, napęczniałe lub rozgałęzione, o ścianach gładkich lub lekko chropowatych. Kolor sporangioforów waha się od jasnobrązowego do brązowego. Osiągają długość od 210 do 2500 µm i średnicę od 5 do 18 µm. Zarodnie są kuliste lub półkuliste, o ściankach kolczastych i w dojrzałym wieku czarne, o średnicy 60–180 µm. Od zarodni Rhizopus stolonifer odróżniają się wielkością; są mniejsze, również zarodniki są mniejsze[3]. Kolumelle kuliste, półkuliste lub owalne. Ściana jest zwykle gładka, jasnobrązowa, średnica waha się w granicach 30-110 µm. Sporangiospory są eliptyczne, kuliste lub wielokątne, prążkowane i osiągają długość 5–8 μm. Uśpione i kiełkujące sporangiospory mają głębokie bruzdy i wydatne wypukłości, których wzór pozwala odróżnić je od R. stolonifer[4]

R. arrhizus tworzy liczne stolony. Są gładkie lub lekko szorstkie, prawie bezbarwne lub jasnobrązowe, o średnicy 5–18 μm. Zygospory są wytwarzane przez komórki diploidalne, gdy rozmnażanie płciowe zachodzi w warunkach ubogich w składniki odżywcze. Mają kolory od czerwonego do brązowego, są kuliste lub bocznie spłaszczone, a ich długość waha się od 60–140 μm. Przy wysokich poziomach składników odżywczych R. arrhizus rozmnaża się bezpłciowo, wytwarzając azygospory. Chlamydospory są liczne, kuliste o średnicy 10–24 µm, eliptyczne i cylindryczne[5].

Rozwój

Kolonie w laboratorium w optymalnych temperaturach rosną szybko (1,6 mm na godzinę, prawie 0,5 μm na sekundę), dzięki czemu można wzrost strzępek obserwować w czasie rzeczywistym pod mikroskopem[6]. Kolonie początkowo są białe, z wiekiem stają się brązowawe i mogą urosnąć do grubości około 1 cm[7]. Może rozwijać się w temperaturze od 7 do 44 °C, a optymalna temperatura wzrostu wynosi 37 °C. W temperaturze 10 do 15 °C wzrost jest bardzo słaby[3]. Preferuje podłoża lekko kwaśne. Dobrze rozwija się przy pH 6,8, bardzo słabo przy pH 7,7–8,1. Dobrze rozwija się na pożywkach zawierających 1% NaCl, bardzo słabo przy 3% NaCl i przestaje rosnąć przy 5% NaCl[8]. Większość aminokwasów – z wyjątkiem L-waliny sprzyja wzrostowi, przy czym najskuteczniejsze są L-tryptofan i L-tyrozyna. Rośnie również dobrze na mineralnych źródłach azotu, z wyjątkiem azotanów, i może wykorzystywać mocznik[4].

Chorobotwórczość

Jest jednym z głównych patogenów powodujących chorobę zwaną mukormykozą[6]. Najczęstszą infekcją jest mukormykoza nosowo-mózgowa, ale choroba może zająć także inne narządy, takie jak skóra, tkanka podskórna i płuca[6].

W 2004 roku opublikowano genom szczepu R. arrhizus 99-880 (wówczas pod nazwą R. oryzae). Był to pierwszy organizm zsekwencjonowany w typie Zygomycetes, do którego wówczas włączono R. oryzae. Charakteryzuje się niezwykle dużym stopniem duplikacji genów. Ma 45,3 Mbp (milionów par zasad) i w 20% składa się z elementów transpozycyjnych. Zawiera 13 895 genów kodujących białka nie pokrywających się z elementami transpozycyjnymi. Sekwencjonowanie klinicznego szczepu Rhizopus arrhizus ujawniło dowody na duplikację całego genomu przodków podczas ewolucji grzyba, co spowodowało ekspansję wielu rodzin genów związanych ze zjadliwością grzybów u ssaków, komórek syntezy ścian i przekazywanie sygnału oraz biosyntezy ergosterolu. Ta wyjątkowa ewolucja genomu wyjaśnia wyjątkowo agresywną skłonność Mucorales do szybkiego wzrostu u pacjentów oraz ogromne zdolności adaptacyjne i przeżycie grzyba w nieprzyjaznym środowisku, w tym środków przeciwgrzybiczych i sił obronnych gospodarza[9].

Zastosowanie

  • R. arrhizus powodując fermentację soi bierze udział w wytwarzaniu tempeh – tradycyjnego składnika kuchni indonezyjskiej. Po jej namoczeniu następuje początkowa fermentacja bakteryjna, później gotowanie, po czym zakwaszenie octem stwarzajace odpowiednie warunki do rozwoju R. arrhizus. Inkubacja fermentacyjna trwa 48 godzin w temperaturze 33 °C. Ogólnie rzecz biorąc, fermentacja za pomocą R. arrhizus owoców, zbóż, orzechów i roślin strączkowych powoduje zmiany smakowe w żywności, takie jak zmiana kwasowości, słodyczy i goryczy[10].
  • Używany jest do przemysłowego wytwarzania kwasu mlekowego i kwasu fumarowego z cukrów, głównie glukozy i fruktozy. Produktem odpadowym jest etanol. Kwas mlekowy stosowany jest jako dodatek do żywności, a także może rozkładać tworzywa sztuczne. Światowa produkcja kwasu mlekowego wynosi obecnie ponad 150 tys. ton[11].
  • W serach modyfikowanych enzymami R. arrhizus dostarcza enzymów rozkładających tłuszcz i białka mleka, tworząc ser w postaci proszku i pasty. W szczególności rozkłada skrzep serowy i kwaśną kazeinę[10].

Przypisy

  1. 1 2 3 Index Fungorum [online] [dostęp 2024-02-08] (ang.).
  2. ↑ Species Fungorum [online] [dostęp 2024-02-08] (ang.).
  3. 1 2 Fungi and food spoilage, wyd. 2, Aspen Publications, 1999, ISBN 978-0834213067.
  4. 1 2 Compendium of soil fungi, Academic Press, 1980 [dostęp 2024-02-08].
  5. ↑ Atlas of clinical fungi. Centraalbureau voor Schimmelcultures, 1995, ISBN 978-9070351267.
  6. 1 2 3 Rhizopus arrhizus [online] [dostęp 2024-02-08].
  7. ↑ Robert A. Samson, Introduction to food-borne fungi, Baarn: Centraalbureau voor Schimmelcultures, Institute of the Royal Netherlands Academy of Arts and Sciences, 1988, ISBN 978-9070351168, OCLC 18574153.
  8. ↑ Taiji Innui, Yoshito Takeda, Hiroshi Iizuka., Taxonomical Studies on Genus Rhizopus, „The Journal of General and Applied Microbiology”, 11 (supplement), 1965, s. 1–121, DOI: 10.2323/jgam.11.supplement_1.
  9. ↑ Bas J. Meussen, Leo H. de Graaff, Johan P.M. Sanders, Ruud A. Weusthuis, Metabolic engineering of Rhizopus oryzae for the production of platform chemicals, „Applied Microbiology and Biotechnology”, 94 (4), 2012, s. 875–886, DOI: 10.1007/s00253-012-4033-0.
  10. 1 2 Dairy products and milk-based food ingredients, [w:] R. Early, Natural Food Additives, Ingredients and Flavourings, Elsevier, 2012, s. 17–445, DOI: 10.1533/9780857095725.2.417.
  11. ↑ Michał Pałys, Zdzisław Targoński, Elwira Komoń-Janczara, Agnieszka Glibowska, Selekcja nowo wyizolowanych szczepów Rhizopus oryzae do wydajnej produkcji kwasu L(+) mlekowego, „Żywność. Nauka. Technologia. Jakość”, 24 (1), 2017, s. 48–58, DOI: 10.15193/zntj/2017/110/172.