Phosphoribosyltransférase de nicotinamide

NAMPT
Structures disponibles
PDBRecherche d'orthologue : PDBe RCSB
Identifiants
AliasNAMPT
IDs externesOMIM: 608764 MGI: 1929865 HomoloGene: 4201 GeneCards: NAMPT
Wikidata
Voir/Editer HumainVoir/Editer Souris
Phosphoribosyltransférase de nicotinamide
N° EC EC 2.4.2.12
N° CAS 9030-27-7
Activité enzymatique
IntEnz Vue IntEnz
BRENDA Entrée BRENDA
KEGG Entrée KEGG
MetaCyc Voie métabolique
PRIAM Profil
PDB RCSB PDB PDBe PDBj PDBsum
GO AmiGO / EGO

La phosphoribosyltransférase de nicotinamide ou nicotinamide-phosphoribosyltransférase (NAMPT), dont la forme extracellulaire (eNAMPT) était connue sous le nom de facteur 1 d'amélioration des colonies de prélymphocytes B (PBEF1) ou de « visfatine »[5], est une enzyme codée chez l’humain par le gène NAMPT[6]. La forme intracellulaire de cette protéine (iNAMPT) est l'enzyme limitante de la voie de récupération du dinucléotide nicotinamide-adénine (NAD+), qui convertit le nicotinamide en nicotinamide mononucléotide (NMN), responsable de la majeure partie de la formation de NAD+ chez les mammifères[7]. L'iNAMPT peut également catalyser la synthèse de NMN à partir du phosphoribosyl pyrophosphate (PRPP) en présence d'ATP[8]. L'eNAMPT est décrite comme une cytokine (PBEF) qui active TLR4[9], favorise la maturation des lymphocytes B et inhibe l'apoptose des neutrophiles.

Réaction

L'iNAMPT catalyse la réaction chimique suivante :

nicotinamide + 5-phosphoribosyl-1-pyrophosphate (PRPP) ⇌ nicotinamide mononucléotide (NMN) + pyrophosphate (PPi)

Ainsi, les deux substrats de cette enzyme sont le nicotinamide et le 5-phosphoribosyl-1-pyrophosphate (PRPP), tandis que ses deux produits sont le nicotinamide mononucléotide et le pyrophosphate.[7]

Cette enzyme appartient à la famille des glycosyltransférases, plus précisément aux pentosyltransférases. Elle intervient dans le métabolisme du nicotinate et du nicotinamide.

Expression et régulation

Le foie présente l'activité iNAMPT la plus élevée de tous les organes, environ 10 à 20 fois supérieure à celle des reins, de la rate, du cœur, des muscles, du cerveau ou des poumons[10]. L'expression d'iNAMPT est diminuée par une augmentation de miR-34a en cas d'obésité, via un site de liaison fonctionnel situé dans la région 3'UTR de l'ARNm d'iNAMPT, ce qui entraine une réduction du NAD(+) et une diminution de l'activité de SIRT1[11].

Les athlètes pratiquant un entrainement d'endurance présentent une expression d'iNAMPT deux fois supérieure dans les muscles squelettiques par rapport aux personnes sédentaires atteintes de diabète de type 2[12]. Dans une étude de six semaines comparant des jambes entrainées par des exercices d'endurance à des jambes non entrainées, l'expression d'iNAMPT était augmentée dans les jambes entrainées[12]. Une étude menée auprès de 21 jeunes adultes (moins de 36 ans) et 22 adultes âgés (plus de 54 ans) ayant suivi un programme d'exercices aérobiques et de résistance pendant 12 semaines a montré que les exercices aérobiques augmentaient l'activité de l'iNAMPT dans les muscles squelettiques de 12 % chez les jeunes et de 28 % chez les personnes âgées, tandis que les exercices de résistance l'augmentaient de 25 % chez les jeunes et de 30 % chez les personnes âgées[13].

Le vieillissement, l'obésité et l'inflammation chronique réduisent l'activité de l'iNAMPT (et par conséquent le NAD+) dans de nombreux tissus[14]. L'activité de la NAMPT favorise une reprogrammation transcriptionnelle proinflammatoire des cellules immunitaires (par exemple, les macrophages[15]) et des astrocytes dans le cerveau[16].

Fonction

L'iNAMPT catalyse la condensation du nicotinamide (NAM) avec le 5-phosphoribosyl-1-pyrophosphate pour former le nicotinamide mononucléotide (NMN), première étape de la biosynthèse du dinucléotide nicotinamide-adénine (NAD+)[17]. Cette voie de récupération, qui réutilise le NAM issu d'enzymes consommatrices de NAD+ (sirtuines, PARP, CD38) et produit du NAM comme déchet, est la principale source de production de NAD+ dans l'organisme[17]. La synthèse de novo de NAD+ à partir du tryptophane a lieu uniquement dans le foie et les reins, majoritairement dans le foie[17].

Nomenclature

Le nom systématique de cette classe d'enzymes est phospho-alpha-D-ribosyltransférase de nicotinamide-nucléotide:diphosphate. Parmi les autres noms utilisés, on trouve :

  • NMN-pyrophosphorylase = pyrophosphorylase de nicotinamide mononucléotide ;
  • NMN-synthétase = synthétase de nicotinamide mononucléotide.

NAMPT extracellulaire

La NAMPT extracellulaire (eNAMPT) diffère fonctionnellement de la NAMPT intracellulaire (iNAMPT) et est moins bien comprise (ce qui explique la multiplicité des appellations de cette enzyme : NAMPT, PBEF et visfatine)[5]. L’iNAMPT est sécrétée par de nombreux types cellulaires (notamment les adipocytes) pour se transformer en eNAMPT. L’enzyme sirtuine 1 (SIRT1) est nécessaire à la sécrétion d’eNAMPT par le tissu adipeux[18]. L’eNAMPT pourrait agir davantage comme une cytokine, bien que son récepteur (potentiellement TLR4) n’ait pas été identifié[8]. Il a été démontré que l’eNAMPT pouvait se lier à TLR4 et l’activer[19].

L’eNAMPT peut exister sous forme de dimère ou de monomère, mais se présente généralement sous forme de dimère circulant[18]. Sous forme monomérique, l'eNAMPT exerce des effets proinflammatoires indépendants du NAD+, tandis que sa forme dimérique protège contre ces effets[18].

L'eNAMPT/PBEF/visfatine a été initialement clonée comme une cytokine putatif capable de stimuler la maturation des précurseurs des lymphocytes B en présence d'interleukine-7 (IL-7) et de facteur de cellules souches ; elle a donc été nommée « facteur de stimulation des colonies de pré-lymphocytes B » (PBEF)[6]. Lorsque le gène codant pour la phosphoribosyltransférase de nicotinamide bactérienne (nadV) a été isolé pour la première fois chez Haemophilus ducreyi, une homologie significative avec le gène PBEF des mammifères a été observée[20]. Rongvaux et al.[21] ont démontré génétiquement que le gène PBEF de la souris conférait l'activité enzymatique Nampt et une croissance indépendante du NAD+ aux bactéries dépourvues de nadV. Revollo et al.[22] ont montré que le gène PBEF de la souris code une enzyme eNAMPT, capable de moduler les concentrations intracellulaires de NAD. Ces résultats ont été confirmés par d'autres équipes[23]. Plus récemment, plusieurs groupes ont rapporté la structure cristalline de Nampt/PBEF/visfatine et ont tous démontré que cette protéine est une phosphoribosyltransférase dimérique de type II impliquée dans la biosynthèse du NAD[24],[25],[26].

Il a été démontré que l'eNAMPT est plus active enzymatiquement que l'iNAMPT, ce qui soutient l'hypothèse selon laquelle l'eNAMPT du tissu adipeux augmente les concentrations de NAD+ dans les tissus présentant de faibles concentrations d'iNAMPT, notamment les cellules bêta pancréatiques et les neurones cérébraux[27].

Rétractation académique

Bien que la fonction cytokinique initiale de PBEF n'ait pas été confirmée à ce jour, d'autres études ont depuis rapporté ou suggéré une fonction de type cytokinique pour cette protéine[28]. Plus précisément, la Nampt/PBEF a récemment été réidentifiée comme une « nouvelle hormone dérivée du tissu adipeux viscéral », nommée visfatine[29]. Il a été rapporté que la visfatine est présente en grande quantité dans le tissu adipeux viscéral chez l'humain et la souris, et que sa concentration plasmatique augmente lors du développement de l'obésité[29]. Il est à noter que la visfatine exercerait des effets mimétiques de l'insuline dans des cultures cellulaires et abaisserait la glycémie chez la souris en se liant au récepteur de l'insuline et en l'activant[29]. Cependant, la pertinence physiologique de la visfatine reste incertaine, car sa concentration plasmatique est 40 à 100 fois inférieure à celle de l'insuline, malgré une affinité de liaison au récepteur similaire[29],[30],[31]. De plus, la capacité de la visfatine à se lier au récepteur de l'insuline et à l'activer reste à confirmer par d'autres équipes. Un article de 2007, qui avaient décrit la visfatine comme une hormone dérivée du tissu adipeux viscéral agissant par liaison et activation du récepteur de l'insuline[29], a dû faire l'objet d'une rétractation[32].

Cible thérapeutique

La NAMPT est de plus en plus étudiée comme cible thérapeutique potentielle. Les activateurs de la NAMPT pourraient avoir des applications potentielles comme médicaments antivieillissement, tandis que les inhibiteurs de la NAMPT pourraient être utiles pour le traitement de certaines formes de cancer[33],[34],[35],[36],[37],[38],[39].

Étant donné que les cellules cancéreuses recourent à une glycolyse accrue que stimule le NAD, l'iNAMPT est souvent amplifiée dans les cellules cancéreuses [40],[41]. L'APO866 (FK866) est un médicament expérimental qui inhibe cette enzyme. Il a été testé pour le traitement du mélanome avancé, du lymphome cutané à cellules T (en) (LCC) et de la leucémie lymphoïde chronique B réfractaire ou en rechute, mais son développement a été abandonné en raison de résultats d'efficacité décevants lors des essais cliniques[42]. Cependant, il a été démontré qu'il inhibe la transition épithéliomésenchymateuse (TEM) et l'angiogenèse tumorale[9], et pourrait être utile pour d'autres indications médicales.

La société biomédicale Calico, spécialisée dans l'antivieillissement, a acquis la licence d'analogues expérimentaux de P7C3 (en) impliqués dans l'amélioration de l'activité de l'iNAMPT[43]. Plusieurs publications ont montré que les composés P7C3 étaient bénéfiques dans des modèles animaux de neurodégénérescence liée à l'âge[44],[45].

Ligands

Activateurs [46],[47],[48]
Inhibiteurs
  • A-1293201
  • CHS-828
  • Daporinad (en) (FK866/APO866)
  • GNE-617
  • Padnarsertib (en) (KPT-9274)
  • STF-118804

Maladie métabolique

Une seule maladie métabolique causée par un dysfonctionnement de cette enzyme est conne. Il s'agit du syndrome MINA (ou axonopathie NAMPT), une neuropathie motrice et sensitive héréditaire très rare.

Notes et références

  1. GRCh38: Ensembl release 89: ENSG00000105835 - Ensembl, May 2017
  2. GRCm38: Ensembl release 89: ENSMUSG00000020572 - Ensembl, May 2017
  3. ↑ « Publications PubMed pour l'Homme », sur National Center for Biotechnology Information, U.S. National Library of Medicine
  4. ↑ « Publications PubMed pour la Souris », sur National Center for Biotechnology Information, U.S. National Library of Medicine
  5. Grolla AA, Travelli C, Genazzani AA, Sethi JK, « Extracellular nicotinamide phosphoribosyltransferase, a new cancer metabokine », British Journal of Pharmacology, vol. 173, no 14,‎ , p. 2182–2194 (PMID 27128025, PMCID 4919578, DOI 10.1111/bph.13505)
  6. Samal B, Sun Y, Stearns G, Xie C, Suggs S, McNiece I, « Cloning and characterization of the cDNA encoding a novel human pre-B-cell colony-enhancing factor », Molecular and Cellular Biology, vol. 14, no 2,‎ , p. 1431–1437 (PMID 8289818, PMCID 358498, DOI 10.1128/MCB.14.2.1431)
  7. ↑ Revollo JR, Grimm AA, Imai S, « The regulation of nicotinamide adenine dinucleotide biosynthesis by Nampt/PBEF/visfatin in mammals », Current Opinion in Gastroenterology, vol. 23, no 2,‎ , p. 164–170 (PMID 17268245, DOI 10.1097/MOG.0b013e32801b3c8f, S2CID 31308112)
  8. Galli U, Colombo G, Travelli C, Tron GC, Genazzani AA, Grolla AA, « Recent Advances in NAMPT Inhibitors: A Novel Immunotherapic Strategy », Frontiers in Pharmacology, vol. 11,‎ (PMID 32477131, PMCID 7235340, DOI 10.3389/fphar.2020.00656 Accès libre)
  9. Galli U, Colombo G, Travelli C, Tron GC, Genazzani AA, Grolla AA, « Recent Advances in NAMPT Inhibitors: A Novel Immunotherapic Strategy », Frontiers in Pharmacology, vol. 11,‎ (PMID 32477131, PMCID 7235340, DOI 10.3389/fphar.2020.00656 Accès libre)
  10. ↑ Hwang ES, Song SB, « Nicotinamide is an inhibitor of SIRT1 in vitro, but can be a stimulator in cells », Cellular and Molecular Life Sciences, vol. 74, no 18,‎ , p. 3347–3362 (PMID 28417163, PMCID 11107671, DOI 10.1007/s00018-017-2527-8, S2CID 25896400)
  11. ↑ Choi SE, Fu T, Seok S, Kim DH, Yu E, Lee KW, Kang Y, Li X, Kemper B, Kemper JK, « Elevated microRNA-34a in obesity reduces NAD+ levels and SIRT1 activity by directly targeting NAMPT », Aging Cell, vol. 12, no 6,‎ , p. 1062–1072 (PMID 23834033, PMCID 3838500, DOI 10.1111/acel.12135)
  12. Jadeja RN, Thounaojam MC, Bartoli M, Martin PM, « Implications of NAD+ Metabolism in the Aging Retina and Retinal Degeneration », Oxidative Medicine and Cellular Longevity, vol. 2020,‎ (PMID 32454935, PMCID 7238357, DOI 10.1155/2020/2692794 Accès libre)
  13. ↑ de Guia RM, Agerholm M, Nielsen TS, Consitt LA, Søgaard D, Helge JW, Larsen S, Brandauer J, Houmard JA, Treebak JT, « Aerobic and resistance exercise training reverses age-dependent decline in NAD+ salvage capacity in human skeletal muscle », Physiological Reports, vol. 7, no 12,‎ (PMID 31207144, PMCID 6577427, DOI 10.14814/phy2.14139)
  14. ↑ Poljsak B, « NAMPT-Mediated NAD Biosynthesis as the Internal Timing Mechanism: In NAD+ World, Time Is Running in Its Own Way », Rejuvenation Research, vol. 21, no 3,‎ , p. 210–224 (PMID 28756747, DOI 10.1089/rej.2017.1975, S2CID 196644501)
  15. ↑ Cameron AM, Castoldi A, Sanin DE, Flachsmann LJ, Field CS, Puleston DJ, Kyle RL, Patterson AE, Hässler F, Buescher JM, Kelly B, Pearce EL, Pearce EJ, « Inflammatory macrophage dependence on NAD+ salvage is a consequence of reactive oxygen species-mediated DNA damage », Nature Immunology, vol. 20, no 4,‎ , p. 420–432 (PMID 30858618, DOI 10.1038/s41590-019-0336-y, S2CID 73728924)
  16. ↑ Meyer T, Shimon D, Youssef S, Yankovitz G, Tessler A, Chernobylsky T, Gaoni-Yogev A, Perelroizen R, Budick-Harmelin N, Steinman L, Mayo L, « NAD+ metabolism drives astrocyte proinflammatory reprogramming in central nervous system autoimmunity », Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, vol. 119, no 35,‎ (PMID 35994674, PMCID 9436380, DOI 10.1073/pnas.2211310119 Accès libre, Bibcode 2022PNAS..11911310M)
  17. Liu L, Su X, Quinn WJ, Hui S, Krukenberg K, Frederick DW, Redpath P, Zhan L, Chellappa K, White E, Migaud M, Mitchison TJ, Baur JA, Rabinowitz JD, « Quantitative Analysis of NAD Synthesis-Breakdown Fluxes », Cell Metabolism, vol. 27, no 5,‎ , p. 1067–1080.e5 (PMID 29685734, PMCID 5932087, DOI 10.1016/j.cmet.2018.03.018)
  18. Yoshino J, Baur JA, Imai SI, « NAD+ Intermediates: The Biology and Therapeutic Potential of NMN and NR », Cell Metabolism, vol. 27, no 3,‎ , p. 513–528 (PMID 29249689, PMCID 5842119, DOI 10.1016/j.cmet.2017.11.002)
  19. ↑ Camp SM, Ceco E, Evenoski CL, Danilov SM, Zhou T, Chiang ET, Moreno-Vinasco L, Mapes B, Zhao J, Gursoy G, Brown ME, Adyshev DM, Siddiqui SS, Quijada H, Sammani S, Letsiou E, Saadat L, Yousef M, Wang T, Liang J, Garcia JG, « Unique Toll-Like Receptor 4 Activation by NAMPT/PBEF Induces NFκB Signaling and Inflammatory Lung Injury », Scientific Reports, vol. 5,‎ (PMID 26272519, PMCID 4536637, DOI 10.1038/srep13135, Bibcode 2015NatSR...513135C)
  20. ↑ Martin PR, Shea RJ, Mulks MH, « Identification of a plasmid-encoded gene from Haemophilus ducreyi which confers NAD independence », Journal of Bacteriology, vol. 183, no 4,‎ , p. 1168–1174 (PMID 11157928, PMCID 94989, DOI 10.1128/JB.183.4.1168-1174.2001)
  21. ↑ Rongvaux A, Shea RJ, Mulks MH, Gigot D, Urbain J, Leo O, Andris F, « Pre-B-cell colony-enhancing factor, whose expression is up-regulated in activated lymphocytes, is a nicotinamide phosphoribosyltransferase, a cytosolic enzyme involved in NAD biosynthesis », European Journal of Immunology, vol. 32, no 11,‎ , p. 3225–3234 (PMID 12555668, DOI 10.1002/1521-4141(200211)32:11<3225::AID-IMMU3225>3.0.CO;2-L Accès libre, S2CID 11043568)
  22. ↑ Revollo JR, Grimm AA, Imai S, « The NAD biosynthesis pathway mediated by nicotinamide phosphoribosyltransferase regulates Sir2 activity in mammalian cells », The Journal of Biological Chemistry, vol. 279, no 49,‎ , p. 50754–50763 (PMID 15381699, DOI 10.1074/jbc.M408388200 Accès libre)
  23. ↑ van der Veer E, Nong Z, O'Neil C, Urquhart B, Freeman D, Pickering JG, « Pre-B-cell colony-enhancing factor regulates NAD+-dependent protein deacetylase activity and promotes vascular smooth muscle cell maturation », Circulation Research, vol. 97, no 1,‎ , p. 25–34 (PMID 15947248, DOI 10.1161/01.RES.0000173298.38808.27 Accès libre)
  24. ↑ Wang T, Zhang X, Bheda P, Revollo JR, Imai S, Wolberger C, « Structure of Nampt/PBEF/visfatin, a mammalian NAD+ biosynthetic enzyme », Nature Structural & Molecular Biology, vol. 13, no 7,‎ , p. 661–662 (PMID 16783373, DOI 10.1038/nsmb1114, S2CID 28674013)
  25. ↑ Kim MK, Lee JH, Kim H, Park SJ, Kim SH, Kang GB, Lee YS, Kim JB, Kim KK, Suh SW, Eom SH, « Crystal structure of visfatin/pre-B cell colony-enhancing factor 1/nicotinamide phosphoribosyltransferase, free and in complex with the anti-cancer agent FK-866 », Journal of Molecular Biology, vol. 362, no 1,‎ , p. 66–77 (PMID 16901503, DOI 10.1016/j.jmb.2006.06.082)
  26. ↑ Khan JA, Tao X, Tong L, « Molecular basis for the inhibition of human NMPRTase, a novel target for anticancer agents », Nature Structural & Molecular Biology, vol. 13, no 7,‎ , p. 582–588 (PMID 16783377, DOI 10.1038/nsmb1105, S2CID 13305867)
  27. ↑ Imai SI, « The NAD World 2.0: the importance of the inter-tissue communication mediated by NAMPT/NAD+/SIRT1 in mammalian aging and longevity control », npj Systems Biology and Applications, vol. 2,‎ (PMID 28725474, PMCID 5516857, DOI 10.1038/npjsba.2016.18)
  28. ↑ Jia SH, Li Y, Parodo J, Kapus A, Fan L, Rotstein OD, Marshall JC, « Pre-B cell colony-enhancing factor inhibits neutrophil apoptosis in experimental inflammation and clinical sepsis », The Journal of Clinical Investigation, vol. 113, no 9,‎ , p. 1318–1327 (PMID 15124023, PMCID 398427, DOI 10.1172/JCI19930)
  29. Fukuhara A, Matsuda M, Nishizawa M, Segawa K, Tanaka M, Kishimoto K, Matsuki Y, Murakami M, Ichisaka T, Murakami H, Watanabe E, Takagi T, Akiyoshi M, Ohtsubo T, Kihara S, Yamashita S, Makishima M, Funahashi T, Yamanaka S, Hiramatsu R, Matsuzawa Y, Shimomura I, « Visfatin: a protein secreted by visceral fat that mimics the effects of insulin », Science, vol. 307, no 5708,‎ , p. 426–430 (PMID 15604363, DOI 10.1126/science.1097243 Accès libre, Bibcode 2005Sci...307..426F, S2CID 86231101)Modèle:Retracted
  30. ↑ Stephens JM, Vidal-Puig AJ, « An update on visfatin/pre-B cell colony-enhancing factor, an ubiquitously expressed, illusive cytokine that is regulated in obesity », Current Opinion in Lipidology, vol. 17, no 2,‎ , p. 128–131 (PMID 16531748, DOI 10.1097/01.mol.0000217893.77746.4b, S2CID 46178743)
  31. ↑ Arner P, « Visfatin--a true or false trail to type 2 diabetes mellitus », The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, vol. 91, no 1,‎ , p. 28–30 (PMID 16401830, DOI 10.1210/jc.2005-2391 Accès libre)
  32. ↑ Fukuhara A, Matsuda M, Nishizawa M, Segawa K, Tanaka M, Kishimoto K, Matsuki Y, Murakami M, Ichisaka T, Murakami H, Watanabe E, Takagi T, Akiyoshi M, Ohtsubo T, Kihara S, Yamashita S, Makishima M, Funahashi T, Yamanaka S, Hiramatsu R, Matsuzawa Y, Shimomura I, « Retraction », Science, vol. 318, no 5850,‎ , p. 565 (PMID 17962537, DOI 10.1126/science.318.5850.565b, S2CID 220091956)
  33. ↑ Chaker M, Minden A, Chen S, Weiss RH, Chini EN, Mahipal A, Azmi AS, « Rho GTPase effectors and NAD metabolism in cancer immune suppression », Expert Opinion on Therapeutic Targets, vol. 22, no 1,‎ , p. 9–17 (PMID 29207896, PMCID 6056002, DOI 10.1080/14728222.2018.1413091)
  34. ↑ Kozako T, Aikawa A, Ohsugi T, Uchida YI, Kato N, Sato K, Ishitsuka K, Yoshimitsu M, Honda SI, « High expression of NAMPT in adult T-cell leukemia/lymphoma and anti-tumor activity of a NAMPT inhibitor », European Journal of Pharmacology, vol. 865,‎ (PMID 31614144, DOI 10.1016/j.ejphar.2019.172738 Accès libre)
  35. ↑ Yao H, Liu M, Wang L, Zu Y, Wu C, Li C, Zhang R, Lu H, Li F, Xi S, Chen S, Gu X, Liu T, Cai J, Wang S, Yang M, Xing GG, Xiong W, Hua L, Tang Y, Wang G, « Discovery of small-molecule activators of nicotinamide phosphoribosyltransferase (NAMPT) and their preclinical neuroprotective activity », Cell Research, vol. 32, no 6,‎ , p. 570–584 (PMID 35459935, PMCID 9160276, DOI 10.1038/s41422-022-00651-9)
  36. ↑ Baldassarri C, Giorgioni G, Piergentili A, Quaglia W, Fontana S, Mammoli V, Minazzato G, Marangoni E, Gasparrini M, Sorci L, Raffaelli N, Cappellacci L, Petrelli R, Del Bello F, « Properly Substituted Benzimidazoles as a New Promising Class of Nicotinate Phosphoribosyltransferase (NAPRT) Modulators », Pharmaceuticals, vol. 16, no 2,‎ , p. 189 (PMID 37259338, PMCID 9967085, DOI 10.3390/ph16020189 Accès libre)
  37. ↑ Wen F, Gui G, Wang X, Ye L, Qin A, Zhou C, Zha X, « Drug discovery targeting nicotinamide phosphoribosyltransferase (NAMPT): Updated progress and perspectives », Bioorganic & Medicinal Chemistry, vol. 99,‎ (PMID 38244254, DOI 10.1016/j.bmc.2024.117595)
  38. ↑ DOI 10.1016/j.molcel.2025.05.022 PMID 40505662 40505662
  39. ↑ Manickam R, Santhana S, Xuan W, Bisht K, Tipparaju S, « Nampt: a new therapeutic target for modulating NAD+ levels in metabolic, cardiovascular, and neurodegenerative diseases », Canadian Journal of Physiology and Pharmacology, vol. 103, no 7,‎ , p. 208–224 (PMID 40203459, DOI 10.1139/cjpp-2024-0400 Accès libre, Bibcode 2025CJPP..103.0400M)
  40. ↑ Yaku K, Okabe K, Hikosaka K, Nakagawa T, « NAD Metabolism in Cancer Therapeutics », Frontiers in Oncology, vol. 8,‎ (PMID 30631755, PMCID 6315198, DOI 10.3389/fonc.2018.00622 Accès libre)
  41. ↑ Pramono AA, Rather GM, Herman H, Lestari K, Bertino JR, « NAD- and NADPH-Contributing Enzymes as Therapeutic Targets in Cancer: An Overview », Biomolecules, vol. 10, no 3,‎ , p. 358 (PMID 32111066, PMCID 7175141, DOI 10.3390/biom10030358 Accès libre)
  42. ↑ APO866 Not Effective for Cutaneous T-Cell Lymphoma. March 2016
  43. ↑ « UT Southwestern researchers discover novel class of NAMPT activators for neurodegenerative disease; Calico enters into exclusive collaboration with 2M to develop UTSW technology »
  44. ↑ Cain C, « NAMPT neuroprotection », Science-Business EXchange, vol. 7, no 38,‎ , p. 1112 (DOI 10.1038/scibx.2014.1112)
  45. ↑ Wang G, Han T, Nijhawan D, Theodoropoulos P, Naidoo J, Yadavalli S, Mirzaei H, Pieper AA, Ready JM, McKnight SL, « P7C3 neuroprotective chemicals function by activating the rate-limiting enzyme in NAD salvage », Cell, vol. 158, no 6,‎ , p. 1324–1334 (PMID 25215490, PMCID 4163014, DOI 10.1016/j.cell.2014.07.040)
  46. ↑ Pinkerton AB, Sessions EH, Hershberger P, Maloney PR, Peddibhotla S, Hopf M, Sergienko E, Ma CT, Smith LH, Jackson MR, Tanaka J, Tsuji T, Akiu M, Cohen SE, Nakamura T, Gardell SJ. Optimization of a urea-containing series of nicotinamide phosphoribosyltransferase (NAMPT) activators. Bioorg Med Chem Lett. 2021 Jun 1;41:128007. DOI 10.1016/j.bmcl.2021.128007 PMID 33798699
  47. ↑ Akiu M, Tsuji T, Sogawa Y, Terayama K, Yokoyama M, Tanaka J, Asano D, Sakurai K, Sergienko E, Sessions EH, Gardell SJ, Pinkerton AB, Nakamura T. Discovery of 1-[2-(1-methyl-1H-pyrazol-5-yl)-[1,2,4]triazolo[1,5-a]pyridin-6-yl]-3-(pyridin-4-ylmethyl)urea as a potent NAMPT (nicotinamide phosphoribosyltransferase) activator with attenuated CYP inhibition. Bioorg Med Chem Lett. 2021 Jul 1;43:128048. DOI 10.1016/j.bmcl.2021.128048 PMID 33887438
  48. ↑ Wang L, Liu M, Zu Y, Yao H, Wu C, Zhang R, Ma W, Lu H, Xi S, Liu Y, Hua L, Wang G, Tang Y. Optimization of NAMPT activators to achieve in vivo neuroprotective efficacy. Eur J Med Chem. 2022 Jun 5;236:114260. DOI 10.1016/j.ejmech.2022.114260 PMID 35385807

Bibliographie

  • Preiss J, Handler P, « Enzymatic synthesis of nicotinamide mononucleotide », The Journal of Biological Chemistry, vol. 225, no 2,‎ , p. 759–770 (PMID 13416279, DOI 10.1016/S0021-9258(18)64875-6 Accès libre)
  • Stephens JM, Vidal-Puig AJ, « An update on visfatin/pre-B cell colony-enhancing factor, an ubiquitously expressed, illusive cytokine that is regulated in obesity », Current Opinion in Lipidology, vol. 17, no 2,‎ , p. 128–131 (PMID 16531748, DOI 10.1097/01.mol.0000217893.77746.4b, S2CID 46178743)
  • Bełtowski J, « Apelin and visfatin: unique "beneficial" adipokines upregulated in obesity? », Medical Science Monitor, vol. 12, no 6,‎ , RA112–RA119 (PMID 16733497)
  • Pilz S, Mangge H, Obermayer-Pietsch B, März W, « Visfatin/pre-B-cell colony-enhancing factor: a protein with various suggested functions », Journal of Endocrinological Investigation, vol. 30, no 2,‎ , p. 138–144 (PMID 17392604, DOI 10.1007/bf03347412, S2CID 20329604)
  • Siderovski DP, Blum S, Forsdyke RE, Forsdyke DR, « A set of human putative lymphocyte G0/G1 switch genes includes genes homologous to rodent cytokine and zinc finger protein-encoding genes », DNA and Cell Biology, vol. 9, no 8,‎ , p. 579–587 (PMID 1702972, DOI 10.1089/dna.1990.9.579)
  • Sanger Center et Genome Sequencing Center, « Toward a complete human genome sequence », Genome Research, vol. 8, no 11,‎ , p. 1097–108 (PMID 9847074, DOI 10.1101/gr.8.11.1097)
  • Rongvaux A, Shea RJ, Mulks MH, Gigot D, Urbain J, Leo O, Andris F, « Pre-B-cell colony-enhancing factor, whose expression is up-regulated in activated lymphocytes, is a nicotinamide phosphoribosyltransferase, a cytosolic enzyme involved in NAD biosynthesis », European Journal of Immunology, vol. 32, no 11,‎ , p. 3225–3234 (PMID 12555668, DOI 10.1002/1521-4141(200211)32:11<3225::AID-IMMU3225>3.0.CO;2-L Accès libre, S2CID 11043568)
  • Kitani T, Okuno S, Fujisawa H, « Growth phase-dependent changes in the subcellular localization of pre-B-cell colony-enhancing factor », FEBS Letters, vol. 544, nos 1–3,‎ , p. 74–78 (PMID 12782293, DOI 10.1016/S0014-5793(03)00476-9, S2CID 8442143)
  • Reuter TY, Medhurst AL, Waisfisz Q, Zhi Y, Herterich S, Hoehn H, Gross HJ, Joenje H, Hoatlin ME, Mathew CG, Huber PA, « Yeast two-hybrid screens imply involvement of Fanconi anemia proteins in transcription regulation, cell signaling, oxidative metabolism, and cellular transport », Experimental Cell Research, vol. 289, no 2,‎ , p. 211–221 (PMID 14499622, DOI 10.1016/S0014-4827(03)00261-1)
  • Jia SH, Li Y, Parodo J, Kapus A, Fan L, Rotstein OD, Marshall JC, « Pre-B cell colony-enhancing factor inhibits neutrophil apoptosis in experimental inflammation and clinical sepsis », The Journal of Clinical Investigation, vol. 113, no 9,‎ , p. 1318–1327 (PMID 15124023, PMCID 398427, DOI 10.1172/JCI19930)
  • Rush J, Moritz A, Lee KA, Guo A, Goss VL, Spek EJ, Zhang H, Zha XM, Polakiewicz RD, Comb MJ, « Immunoaffinity profiling of tyrosine phosphorylation in cancer cells », Nature Biotechnology, vol. 23, no 1,‎ , p. 94–101 (PMID 15592455, DOI 10.1038/nbt1046, S2CID 7200157)
  • Janssen JJ, Klaver SM, Waisfisz Q, Pasterkamp G, de Kleijn DP, Schuurhuis GJ, Ossenkoppele GJ, « Identification of genes potentially involved in disease transformation of CML », Leukemia, vol. 19, no 6,‎ , p. 998–1004 (PMID 15815727, DOI 10.1038/sj.leu.2403735 Accès libre)
  • van der Veer E, Nong Z, O'Neil C, Urquhart B, Freeman D, Pickering JG, « Pre-B-cell colony-enhancing factor regulates NAD+-dependent protein deacetylase activity and promotes vascular smooth muscle cell maturation », Circulation Research, vol. 97, no 1,‎ , p. 25–34 (PMID 15947248, DOI 10.1161/01.RES.0000173298.38808.27 Accès libre)
  • Ognjanovic S, Ku TL, Bryant-Greenwood GD, « Pre-B-cell colony-enhancing factor is a secreted cytokine-like protein from the human amniotic epithelium », American Journal of Obstetrics and Gynecology, vol. 193, no 1,‎ , p. 273–282 (PMID 16021090, PMCID 1382169, DOI 10.1016/j.ajog.2004.11.003)

Liens externes

  • icône décorative Portail de la biologie cellulaire et moléculaire